免疫組化中IHC vs ICC的區(qū)別。英瀚斯生物為您說明。除了生物學(xué)來源，IHC和ICC在樣品處理的程度上也有所不同。ICC需要透化，要么通過固定過程，要么是單獨的透化步驟，這樣抗體才能與細(xì)胞內(nèi)的靶點相結(jié)合。而IHC可能不要單獨的透化步驟，這取決于切片的厚度和固定方法。包埋在石蠟中的IHC切片必須進一步處理，才能進行抗體染色。一旦處理好樣品，IHC和ICC的染色操作就幾乎沒什么差異了。當(dāng)然，就染色而言，根據(jù)所使用的抗體來優(yōu)化還是少不了的。免疫組化檢測多少錢？內(nèi)蒙古動物組織免疫組化推薦

免疫組化結(jié)果中的假陰性是指所有抗體標(biāo)記的切片均呈陰性，無陽性信號，假陰性結(jié)果不是真實的反應(yīng)。導(dǎo)致假陰性結(jié)果的原因有:(1)抗原修復(fù)方法選擇不當(dāng)，根據(jù)不同的抗原特點采用不同的修復(fù)方法，大多數(shù)抗體要求熱修復(fù)，熱修復(fù)又包括高壓修復(fù)、微波修復(fù)及煮沸熱修復(fù);而對某些細(xì)胞內(nèi)抗原和細(xì)胞間質(zhì)抗原需要用酶消化，如表皮生長因子(EGFR)要求胃蛋白酶(Pepsin)消化，而Vimentin則不用修復(fù);(2)一抗本身的問題:一抗效價降低或失效。在免疫組化中染色結(jié)果的假陰性會導(dǎo)致錯診或漏診，進而影響臨床診斷及延誤醫(yī)療。解決這一問題的可通過設(shè)立陽性對照，比較兩者染色結(jié)果。若陽性對照有表達，表明試劑和染色體系及實驗步驟均無問題;若陽性對照無表達，則檢測過程中某一試劑或某個步驟存在問題，應(yīng)逐一查找原因。做得好的免疫組化外包英瀚斯實驗外包，病理染色切片免疫組化，效率高！

免疫組化的DAB顯色時間如何把握？

1、DAB顯色時間不是固定的，主要由顯微鏡下控制顯色時間，到出現(xiàn)淺棕色本底時即可沖洗；

2、DAB顯色時間很短（如幾秒或幾十秒）就出現(xiàn)很深的棕褐色，這很可能說明你的抗體濃度過高或抗體孵育時間過長，需要下調(diào)抗體濃度或縮短你的抗體孵育時間；

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3、此外，若很短時間就出現(xiàn)背景很深，還有可能你前面的封閉非特異性蛋白不全，需要延長封閉時間；

4、DAB顯色時間很長（如超過十幾分鐘）才出現(xiàn)陽性染色，一方面可能說明你的抗體濃度過低或孵育時間過短（比較好一抗4度過夜）；另一方面就是封閉時間過長。

免疫組化的定量分析怎么做？

免疫組化的定量分析是通過圖像分析軟件對顯色結(jié)果進行定量評估。免疫組化常用的方法有光密度分析和陽性細(xì)胞計數(shù)。光密度分析是通過測量顯**域的光密度值，評估目標(biāo)蛋白的表達水平。免疫組化陽性細(xì)胞計數(shù)是通過計數(shù)顯色陽性的細(xì)胞數(shù)量，評估目標(biāo)蛋白的表達水平。定量分析需要考慮多個因素，如顯色強度、背景信號和切片厚度。此外，免疫組化定量分析的結(jié)果通常只能進行半定量分析，不能提供***的定量數(shù)據(jù)。 英瀚斯生物，組織包埋、切片、染色、免疫組化拍照、報告分析，一站式搞定！

免疫組化（IHC）利用抗體檢測組織切片中蛋白質(zhì)和其他抗原的定位。

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抗體-抗原的相互作用通過有色酶底物顯色檢測或熒光染料熒光檢測進行觀察。雖然IHC在定量方面不如蛋白質(zhì)印跡或ELISA，但是IHC可以提供完整組織中蛋白定位的寶貴信息。蛋白表達譜對病理學(xué)家以及作為診斷工具都具有重要意義。

IHC實驗成功的關(guān)鍵在于穩(wěn)定、優(yōu)化且可重復(fù)的染色方案，而該方案應(yīng)使用高質(zhì)量的特異性試劑。 動物、細(xì)胞的免疫組化、免疫熒光，就找英瀚斯生物！貴州靠譜免疫組化推薦

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免疫組化的結(jié)果分析：

免疫組化實驗通常需要設(shè)置陽性對照、陰性對照（或替代對照）（陽性對照是排除方法和實驗系統(tǒng)有無問題；陰性對照與替代對照是排除有無非特異性染色）。一般情況下，陽性對照顏色的特點為：Ag定位，包漿、胞核、胞膜、間質(zhì)具有結(jié)構(gòu)性。且染色的強度不同（顏色深淺不一）；陰性對照的特點為：染色細(xì)胞與組織無區(qū)別，顏色具有彌散性，分布均勻。

英瀚斯生物可承接各類病理染色，包括免疫組化。

說明：免疫組化實驗可以對結(jié)果進行定量分析，但要實驗得到的必須是高質(zhì)量的染色切片，要求背景染色淺且特異性染色較深，這樣分析的結(jié)果才會比較準(zhǔn)確。 內(nèi)蒙古動物組織免疫組化推薦